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Real-time PCR實驗注意事項

更新時間:2012-09-13      點(diǎn)擊次數(shù):4014

 

 

Real-time PCR實驗注意事項
實驗中的一些好習(xí)慣
加入試劑之前,把它混勻一下,以免放置時間長了濃度不均
移液槍用完之后要?dú)w到zui大計量的位置,防止久而久之彈簧失去彈性
一定要記著關(guān)水浴箱,切記切記
多和大家討論,同時多關(guān)注別人討論的經(jīng)驗,這幾乎是zui快提高的捷徑了
所有的試劑都自己配,出了問題才好找原因
防止RNA酶污染的措施
1.   所有的玻璃器皿均應(yīng)在使用前于180℃的高溫下干烤6hr或更長時間。
2.   塑料器皿可用0.1% DEPC水浸泡或用氯仿沖洗(注意:有機(jī)玻璃器具因可被氯仿腐蝕,故不能使用)。
3.   有機(jī)玻璃的電泳槽等,可先用去污劑洗滌,雙蒸水沖洗,乙醇干燥,再浸泡在3% H2O2 室溫10min,然后用0.1% DEPC水沖洗,晾干。
4.   配制的溶液應(yīng)盡可能的用0.1% DEPC,在37℃處理12hr以上。然后用高壓滅菌除去殘留的DEPC。不能高壓滅菌的試劑,應(yīng)當(dāng)用DEPC處理過的無菌雙蒸水配制,然后經(jīng)0.22μm濾膜過濾除菌。
5.   操作人員戴一次性口罩、帽子、手套,實驗過程中手套要勤換。
6.   設(shè)置RNA操作實驗室,所有器械等應(yīng)為。
二、常用的RNA酶抑制劑

1.  焦磷酸二乙酯(DEPC):是一種強(qiáng)烈但不*的RNA酶抑制劑。它通過和RNA酶的活性基團(tuán)組氨酸的咪唑環(huán)結(jié)合使蛋白質(zhì)變性,從而抑制酶的活性。
2.  異硫氰酸胍:目前被認(rèn)為是zui有效的RNA酶抑制劑,它在裂解組織的同時也使RNA酶失活。它既可破壞細(xì)胞結(jié)構(gòu)使核酸從核蛋白中解離出來,又對RNA酶有強(qiáng)烈的變性作用。
3.  氧釩核糖核苷復(fù)合物:由氧化釩離子和核苷形成的復(fù)合物,它和RNA酶結(jié)合形成過渡態(tài)類物質(zhì),幾乎能*抑制RNA酶的活性。
4.  RNA酶的蛋白抑制劑(RNasin):從大鼠肝或人胎盤中提取得來的酸性糖蛋白。RNasin是RNA酶的一種非競爭性抑制劑,可以和多種RNA酶結(jié)合,使其失活。
5.  其它:SDS、尿素、硅藻土等對RNA酶也有一定抑制作用。
因為DEPc不加選擇的修飾蛋白質(zhì)和RNA,因此在分離和純化RNA過程中不能使用,而且它與一些緩沖液(例如Tri)不能相容
在所有RNA實驗中,zui關(guān)鍵的因素是分離得到全長的RNA。而實驗失敗的主要原因是核糖核酸酶(RNA酶)的污染。
RNA酶可耐受多種處理而不被滅活,如煮沸、高壓滅菌等。
研究人員造成的污染 RNA酶zui主要的潛在污染源是研究人員的手。因此進(jìn)行RNA實驗時應(yīng)勤換手套。
DEPC能與胺和巰基反應(yīng),因而 含Tris和DTT的試劑不能用DEPC處理
(一)動植物總RNA提取-Trizol法
  Trizol法適用于人類、動物、植物、微生物的組織或培養(yǎng)細(xì)菌,樣品量從幾十毫克至幾克。用Trizol法提取的總RNA*蛋白和DNA污染。 RNA可直接用于Northern斑點(diǎn)分析,斑點(diǎn)雜交, Poly(A)+分離,體外翻譯,RNase封阻分析和分子克隆。
  1、將組織在液N中磨成粉末后,再以50-100mg組織加入1ml Trizol液研磨,注意樣品總體積不能超過所用Trizol體積的10%。
  2、研磨液室溫放置5分鐘,然后以每1mlTrizol液加入0.2ml的比例加入氯仿,蓋緊離心管,用手劇烈搖蕩離心管15秒。
  3、取上層水相于一新的離心管,按每mlTrizol液加0.5ml異丙醇的比例加入異丙醇,室溫放置10分鐘,12000g離心10分鐘。
  4、棄去上清液,按每ml Trizol液加入至少1ml的比例加入75%乙醇,渦旋混勻,4
℃下7500g離心5分鐘。
  5、小心棄去上清液,然后室溫或真空干燥5-10分鐘,注意不要干燥過分,否則會降低RNA的溶解度。然后將RNA溶于水中,必要時可55
℃-60℃水溶 10分鐘。RNA可進(jìn)行mRNA分離,或貯存于70%乙醇并保存于-70℃。
  [注意] 1、整個操作要帶口罩及一次性手套,并盡可能在低溫下操作。
另外,提取上清這步一定要小心,靠近沉淀的部分一定要舍得不要,要不然會有蛋白質(zhì)污染,影響比值
  2、加氯仿前的勻漿液可在-70℃保存一個月以上,RNA沉淀在70%乙醇中可在4℃保存一周,-20℃保存一年。
總mRNA的提?。?/span>自己的經(jīng)驗)
一、  關(guān)于Trizol Reagent需要的試劑
1.  Chloroform:氯仿 (分析純)
2.  Isoproplyl alcohol:異丙醇(分析純)
3.  75% Ethanol(in DEPC-treated water):75%乙醇。要求用分析純無水乙醇并用0.01%的DEPC處理過的無Rnase的水稀釋。
4.  RNase-free water:無Rnase的水。方法是:將DEPC按0.01%(V/V)加在d H2O中500ml(50ul),在37過夜,并高壓滅菌即得(150℃ 3小時)
5.  一次性塑料手套
6.  注意:DEPC有致癌之嫌
二、  關(guān)于Trizol Reagent的使用過程:
1.  Homogenization(勻漿)
a.  Tissues:組織
每100mg組織勻漿加1mlTrizol試劑,樣品體積不能超過Trizol試劑的10%。
b.  Cells Grown in monolayer(單層細(xì)胞接毒后出現(xiàn)病變的)
針對JEV細(xì)胞總RNA的抽提法:
BHK21細(xì)胞長成單層后,接毒0.5-1ml(采用大瓶),37吸附1h,倒掉,加維持液(含2%的血清和HEPE8的MEM)約5ml,維持天。出 現(xiàn)75%-100%的病變時,以PBS(預(yù)冷)沖洗細(xì)胞兩次,直接在細(xì)胞瓶中加入Trizol試劑1ml/10cm2,吹吸幾次,以裂解細(xì)胞(細(xì)胞瓶有兩 種常用規(guī)格:大的約45cm2,小的約30cm2,故所用Trizol試劑分別約為4.5ml和3ml。Trizol試劑的加入是依細(xì)胞瓶而定,以蓋滿瓶 底為度,而不是依據(jù)細(xì)胞的數(shù)量,否則可導(dǎo)致DNA的污染)具體方法如下:(樣品一定要新鮮)
(1)  組織接入預(yù)冷的EP管中,加入Trizol試劑1ml/10cm2(量一定要加足,否則易污染),混勻,吹吸幾次,以破裂細(xì)胞,置室溫5min,以使核蛋白復(fù)合物*分離。
(2)  加氯仿0.2ml(每1ml Trizol試劑加入氯仿0.2ml),蓋好,劇烈震蕩15s,置室溫2-3分鐘。
(3)  4離心,10000g×15min,離心后,混合物將分離為底層為淺紅的、中層為酚-氯仿相、上層為無色的水相。RNA包含在水相中,水相的體積約相當(dāng)于所加的Trizol試劑量的60%。
(4)  仔細(xì)吸取上層水相,移至另一EP管中。
(5)  加0.5ml異丙醇,以沉淀RNA(每1ml Trizol試劑加入0.5ml異丙醇),置室溫10min。
(6)  4離心,10000g×10min。RNA沉淀為一層如凝膠樣透明的小塊附在管底和管壁。
(7)   棄上清液,加入預(yù)冷的75%乙醇1ml(每1ml Trizol試劑加入75%乙醇至少1ml),震蕩,充分洗滌沉淀,4離心,5500g×5min。棄上清液,空氣干燥(或真空干燥)后,沉淀重懸于無 Rnase dH2O中,吹吸幾次,55℃-60作用10分鐘以溶解RNA,-70保存?zhèn)溆谩?/span>
(8)  抽提出的細(xì)胞總RNA干燥后加水50ul,取10ul加無Rnase水990ul,稀釋100倍成1ml。于0.5cm厚的石英比色杯中,以無Rnase水為對照,在721型紫外分光光度計下檢測,結(jié)果應(yīng)為:A260/280 ratio<1.6。
(9)  分離組織10mg(純組織)加800ul Trizol試劑。
(10)  擴(kuò)增產(chǎn)物的鑒定:。
DEPC處理方法如下
1. DEPC處理
1)DEPC水:100ml超純水加入0.2ml DEPC,充分混勻,高壓滅菌。
2)Tip頭(槍頭)、EP管等在提RNA過程中及做RT時接觸RNA的器材(包括1ml、200μl、20μl Tip頭;EP管和PCR反應(yīng)管等):用0.1%的DEPC水(1000 ml超純水加入1ml DEPC)37浸泡過夜,高壓滅菌。
2. 提取RNA,用DEPC水溶解
3. RT
我是用PCR儀來控制溫度和時間的,所以RT是在PCR反應(yīng)管中作的。
4. 操作過程中要戴一次性手套,并經(jīng)常換手套。
把要直接接觸樣品的東西都用DEPC水處理一下,槍頭盒插好槍頭后,加入1-2ml的0.1%DEPC水,在滅菌就行了;現(xiàn)在有進(jìn)口的RNASE FREE的槍頭買,直接用不用處理的
如何消除污染
機(jī)器運(yùn)行完后,取出PCR產(chǎn)物時不能隨便丟棄,應(yīng)該用塑料手套或其他打結(jié)包好后丟入垃圾桶。
(1)       試劑:mixer盡量分裝,不要原瓶多次取用。
2)加樣:原則是DNAzui后加,其他試劑按照體積大小從大往小的加。如果是同種引物和探針有多管的話只是DNA不同,那么采取的方法是算出總體積后加在一個管子里面,混合均勻之后再分裝到各個管子里去,這樣可以有效地避免誤差及污染。
另外,普通實驗室容易污染,且污染程度很高,與跑電泳還有質(zhì)粒制備提取都在同一個房間里有比較大的關(guān)系,zui容易造成高濃度污染的就是產(chǎn)物的開蓋和質(zhì)粒的稀釋。
目 前,國內(nèi)外各個公司提供的診斷試劑盒大多采用了UNG來防污染。Uracil-DNA N-glycosylase(UNG)尿嘧啶DNA糖基酶,來源于大腸桿菌重組克隆表達(dá)。
RNA定量
RNA也至少要用電泳,一方面定量,另一方面可以看看完整性。至于用分光光度計比較 不同標(biāo)本之間就更不準(zhǔn)了。
RNA的貯藏,zui主要的是溫度,-20不夠,-80,液氮zui保險
mRNA是不能代替蛋白水平的分析的,因為還有翻譯效率和RNA降解速度 的影響
RT-PCR有兩種做法
條件具備的話可用kit進(jìn)行一步法進(jìn)行;若條件不太好的話可分兩步進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄再PCR。但后來發(fā)現(xiàn)兩步法的結(jié)果更加理想,條帶特異性強(qiáng)且無拖尾現(xiàn)象,我推測是體系更加單一比較利于PCR的進(jìn)行
一定要做內(nèi)參的,每一次,我想。不作內(nèi)參的結(jié)果是不可信的
電泳可以不一起跑,沒有關(guān)系,計算的是相對表達(dá)程度,半定量和定量RT-PCR做的都是基因相對表達(dá) 量,不是表達(dá)量
mRNA的分離與純化中
步驟(4)中將RNA溶液置65℃中溫育然后冷卻至室溫再上樣的目的有兩個,一個是破壞RNA的二級結(jié)構(gòu),尤其是mRNA Poly(A+)尾處的二級結(jié)構(gòu),使Poly(A+)尾充分暴露,從而提高Poly(A+)RNA的回收率;另一個目的是能解離mRNA與rRNA的結(jié) 合,否則會導(dǎo)致rRNA的污染。所以此步驟不能省略。
下面,我們介紹一個可以確認(rèn)RNA溶液中有沒有殘留的RNA酶的方法。
3)保溫試驗
方法很簡單的,按照樣品濃度,從RNA溶液中吸取兩份1000 ng的RNA加入至0.5 ml的離心管中,并且用pH7.0的Tris緩沖液補(bǔ)充到10 ul的總體積,然后密閉管蓋。把其中一份放入70
℃的恒溫水浴中,保溫1 h。另一份放置在-20℃冰箱中保存1 h。
時間到了之后,取出兩份樣本進(jìn)行電泳。電泳完成后,比較兩者的電泳條帶。如果兩者的條帶一致或者無明顯差別(當(dāng)然,它們的條帶也要符合方法2中的條件), 則說明RNA溶液中沒有殘留的RNA酶污染,RNA的質(zhì)量很好。相反的,如果70
℃保溫的樣本有明顯的降解,則說明RNA溶液中有RNA酶污染。
PCR污染與對策
)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物污染.這是PCR反應(yīng)中zui主要zui常見的污染問題,所以,擴(kuò)增區(qū)的儀器什么如槍頭等要注意。
還有一種容易忽視,zui可能造成PCR產(chǎn)物污染的形式是氣溶膠污染;在空氣與液體面摩擦?xí)r就可形成氣溶膠,在操作時比較劇烈地?fù)u動反應(yīng)管,開蓋時、吸樣時及污染進(jìn)樣槍的反復(fù)吸樣都可形成氣溶膠而污染.據(jù)計算一個氣溶膠顆??珊?8000拷貝,因而由其造成的污染是一個值得特別重視的問題.
1標(biāo)本處理區(qū),包括擴(kuò)增摸板的制備;
2. PCR擴(kuò)增區(qū),包括反應(yīng)液的配制和PCR擴(kuò)增;
3. 產(chǎn)物分析區(qū),凝膠電泳分析,產(chǎn)物拍照及重組克隆的制備。
各工作區(qū)要有一定的隔離,操作器材,要有一定的方向性。如:標(biāo)本制備→PCR擴(kuò)增→產(chǎn)物分析→產(chǎn)物處理。
切記:產(chǎn)物分析區(qū)的產(chǎn)物及器材不要拿到其他兩個工作區(qū)。
使用一次性吸頭,嚴(yán)禁與PCR產(chǎn)物分析室的吸頭混用,吸頭不要長時間暴露于空氣中,避免氣溶膠的污染;
操作多份樣品時,制備反應(yīng)混合液,先將dNTP、緩沖液、引物和酶混合好,然后分裝,這樣即可以減少操作,避免污染,又可以增加反應(yīng)的度
反應(yīng)液污染
可采用下列方法之一處理:
1. DNase I法:PCR混合液(未加模板和Taq聚合酶)加入0.5U DNase I,室溫反應(yīng)30 min后加熱滅活,然后加入模板和Taq聚合酶進(jìn)行正常PCR擴(kuò)增。該方法的優(yōu)點(diǎn)是不需要知道污染DNA的序列;
(三)尿嘧啶糖苷酶(UNG)法
由于UV照射的去污染作用對500bp以下的片段效果不好,而臨床用于檢測的PCR擴(kuò)增片段通常為300bp左右,因此UNG的預(yù)防作用日益受到重視和肯定。
1、提取mRNA時所用的EP管、玻璃等器皿全部都要用0.1%DEPC水浸泡。然后烘干,高壓滅菌,再烘干。
2
、用DEPC水洗過后當(dāng)然不能用雙蒸水洗了。那你用DEPC處理還有什么意義呢?還要用雙蒸水洗嗎?
3
、玻璃器皿干烤:180度,8小時或更長時間;小器皿也可以用少許氯仿處理一下。另外,鐵制品、研砵等也可倒上酒精直接燒。

 

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